ОПТИМИЗАЦИЯ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ LAGOCHILUS INEBRIANS BUNGE В УСЛОВИЯХ IN VITRO
PDF

Keywords

Lagochilus inebrians
культура in vitro
клональное микроразмножение
питательная среда
6-бензиламинопурин
НУК
ИМК
регуляторы роста
лекарственные растения Центральной Азии.

How to Cite

ОПТИМИЗАЦИЯ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ LAGOCHILUS INEBRIANS BUNGE В УСЛОВИЯХ IN VITRO. (2026). Qo‘qon DPI. Ilmiy Xabarlar Jurnali, 8(6), 561-566. https://doi.org/10.70728/a.series.tab.v08.i06.077

Abstract

В статье представлены результаты сравнительного исследования влияния шести составов питательных сред на морфометрические показатели растений Lagochilus inebrians Bunge в условиях in vitro. Изучено воздействие 6-бензиламинопурина (БАП) в концентрациях 0,5 и 1,0 мг/л, а также его комбинаций с нафтилуксусной кислотой (НУК) и индолилмасляной кислотой (ИМК) на биомассу надземной части, высоту побега, массу корневой системы и длину корней. Максимальная биомасса побегов (5,02 г) и наибольшая масса корней (0,80 г) зафиксированы на средах с БАП 0,5 мг/л и БАП 1,0 мг/л соответственно. Добавление ауксинов в высоких концентрациях снижает продуктивность побегообразования. Полученные данные могут служить основой для разработки двухэтапного протокола клонального микроразмножения данного редкого лекарственного растения.
PDF

References

1. Набиев М. М. Лекарственные растения Узбекистана. — Ташкент: Укитувчи, 1991. — 351 с.

2. Мусаев Д. А., Турсунов Х. Т. Зайцегуб опьяняющий: химический состав и биологическая активность // Химия природных соединений. — 2004. — № 3. — С. 185–192.

3. Государственная фармакопея СССР. XI издание. Т. 2. — М.: Медицина, 1990. — 400 с.

4. Kushiev K., Sultonova K. Lagochilus inebrians Bunge Microclonal Propagation Under in vitro Conditions // Bulletin of Science and Practice. — 2022. — Vol. 8, № 9. — P. 79–85. DOI: 10.33619/2414-2948/82/11.

5. Sultonova K., Kushiev Kh. Obtaining Pathogen-Free Seedlings Based on Microclonal Propagation of Lagochilus inebriance Bunge Using in vitro Methods // International Journal of Genetic Engineering. — 2022. — Vol. 10 (1). — P. 10–15. DOI: 10.5923/j.ijge.20221001.03.

6. Sultonova K. Optimization of In Vitro Microcloning of Lagochilus inebrians Bunge // Journal of Multidisciplinary Applied Natural Science. — 2025. — Vol. 5 (3). — P. 833–849.

7. Красная книга Республики Узбекистан. Т. 1: Растения. — Ташкент: Chinor ENK, 2009. — 356 с.

8. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures // Physiologia Plantarum. — 1962. — Vol. 15. — P. 473–497.

9. George E. F., Hall M. A., De Klerk G.-J. Plant Propagation by Tissue Culture. 3rd ed. Vol. 1. — Springer, 2008. — 501 p.

10. Debergh P. C., Read P. E. Micropropagation // Micropropagation: Technology and Application / ed. P. C. Debergh, R. H. Zimmerman. — Dordrecht: Kluwer, 1991. — P. 1–13.

11. Skoog F., Miller C. O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro // Symp. Soc. Exp. Biol. — 1957. — Vol. 11. — P. 118–140.

12. Rout G. R., Mohapatra A., Jain S. M. Tissue culture of ornamental pot plant: a critical review on present scenario and future prospects // Biotechnology Advances. — 2006. — Vol. 24. — P. 531–560. DOI: 10.1016/j.biotechadv.2006.05.001.

13. Woodward A. W., Bartel B. Auxin: Regulation, action, and interaction // Annals of Botany. — 2005. — Vol. 95. — P. 707–735. DOI: 10.1093/aob/mci083.

14. Долезал К., Малá Я. Новые производные цитокининов в клональном микроразмножении редких видов деревьев // BMC Proceedings. — 2011. — Vol. 5 (Suppl. 7). — О46. DOI: 10.1186/1753-6561-5-S7-O46.

15. Катаева Н. В., Бутенко Р. Г. Клональное микроразмножение растений. — М.: Наука, 1983. — 96 с.

16. Быков В. А., Мартынова Н. А. Методические рекомендации по культивированию лекарственных растений in vitro. — М.: ВИЛАР, 2003. — 56 с.

17. Siddique I., Anis M. Rapid micropropagation of Ocimum basilicum L. through shoot tip culture // Acta Physiologiae Plantarum. — 2007. — Vol. 29. — P. 289–296. DOI: 10.1007/s11738-007-0031-7.

18. Rani G., Virk G. S., Nagpal A. Callus induction and plantlet regeneration in Withania somnifera (L.) Dunal // In Vitro Cellular & Developmental Biology — Plant. — 2003. — Vol. 39. — P. 468–474.

19. Лакин Г. Ф. Биометрия. — М.: Высшая школа, 1990. — 352 с.

20. Tojiboeva D. S. et al. Determination of the amount of mineral elements contained in the inebrin substance // European Scholar Journal. — 2023. — Vol. 4 (5). — P. 19–21.